SCA® Movilidad y concentración es un modulo de análisis de la motilidad y concentración en una muestra de semen de ratón o rata.
| Este módulo de análisis también está disponible para Humano y Veterinaría. |
Ideal para el ensayo con medicamentos, productos químicos y radaciones para su toxicidad. Este sistema se adhiere a las directrices 21 CFR11.
Más información:
Últimas novedades de SCA® Movilidad y concentración
Últimas novedades de SCA® Movilidad y concentración
Histograma velocidades
Nuevo histograma de velocidades de los espermatozoides (VCL).
Parámetro drift
Opción que permite eliminar el movimiento de deriva en la muestra.
Selección de criterio
Visualización de las trayectorias segun varios criterios.
Exportar vídeos
Exportar videos .avi incluyendo o no las trayectorias del análisis.
Características principales de SCA® Movilidad y concentración
Características principales de SCA® Movilidad y concentración
SCA® Movilidad y concentración detecta los espermatozoides de forma automática.
Las muestras se analizan en contraste de fases negativo (ratón) y pseudo contraste de fases (rata).
El contaje de espermatozoides y el análisis de la motilidad se realizan simultáneamente.
Los espermatozoides móviles se analizan siguiendo la trayectoria del esperma y la velocidad. Los resultados, que comprenden todos los parámetros cinemáticos del CASA, se presentan en cuestión de segundos.
SCA® es una poderosa herramienta, ya que el sistema CASA es el único método objetivo que permite analizar el total de espermatozoides progresivos y móviles en una muestra.
Permite guardar los datos detallados (todos los parámetros analizados) de cada espermatozoide en la base de datos o exportarlos directamente a Microsoft Excel.
Información adicional
Información adicional
| Edición Veterinaria |
Edición Toxicología |
Edición Investigación |
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| Creación de nuevas configuraciones de análisis |  |
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| Modificación de la velocidad de adquisición de imágenes fps | |
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| Modificación de la óptica, microscopio escalas y opciones de captura de imagen. | |
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| Elección de cámara de análisis (Leja®, Makler®, etc) | |
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| Platina motorizada prior optiscan III | |
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| Área de la partícula (cabeza del espermatozoide) | |
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| VCL o VAP, STR, LIN, VAP, Conectividad, grupo, restricciones de análisis | |
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| Especies: Humano | – | – | |
| Especies: Todas (humano, todos los animales, incluidos rata y ratón) | – | – | |
| Especies: Todos los animales con cabeza oval | |
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| Especies: rata y ratón | – | |
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| Edición Veterinaria |
Edición Toxicología |
Edición Investigación |
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| Cámara digital Basler específica con resolución 780×580 y hasta 75 fps (velocidad de captura de imágenes) | |
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| Cámara digital Basler específica con resolución 1280×1024 y hasta 200 fps (velocidad de captura de imágenes) | |
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| Edición Veterinaria |
Edición Toxicología |
Edición Investigación |
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| Total de espermatozoides analizados | |
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| Porcentaje de los espermatozoides analizados que son Estáticos, No progresivos y progresivos. | |
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| Concentración en M/ml y en el volumen de la muestra | |
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| Concentración en M/ml y en el volumen de la muestra de estáticos, no-progresivos y progresivos | |
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| Total y porcentajes de espermatozoides analizados rápidos, medios, lentos y estáticos | |
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| Concentración en M/ml y en el volumen de la muestra de rápidos, medios, lentos y estáticos | |
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| Total y porcentaje de Rápidos progresivos, Medios progresivos, No progresivos y Estáticos |
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| Concentración en M/ml y en el volumen de la muestra de Rápidos progresivos, Medios progresivos, No progresivos y Estáticos | |
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| Área de la cabeza, Media en µm al cuadrado | |
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| Área de la cabeza en estáticos, lentos, medios y rápidos de los espermatozoides analizados | |
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| Media de las células redondeas en M/ml | |
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| Concentración total de las células redondas en M/ml | |
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| Total y porcentaje de las trayectorias circulares | |
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| Media de VCL, VSL, VAP, LIN, STR, WOB en los espermatozoides analizados | |
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| Media de VCL, VSL, VAP, LIN, STR, WOB en los espermatozoides analizados lentos, medios y rápidos | |
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| Total y porcentaje de los espermatozoides analizados hiperactivos | |
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| Concentración de los espermatozoides hiperactivos en M/ml y en M/muestra | |
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| Valores medios de ALH y BCF en los espermatozoides analizados | |
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| ALH y BCF en espermatozoides lentos y rápidos progresivos | |
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| Imágenes de captura y gráficos de distribución | |
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| Videos capturados | |
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| Edición Veterinaria |
Edición Toxicología |
Edición Investigación |
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| SCA® dataShare | |
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| SCA® Stage Controller |
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| SCA® Capture | |
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| SCA® Viewer | |
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| SCA® Editor | |
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| SCA® Gotas | |
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| La movilidad y concentración son analizadas en contraste de fases (una técnica de microscopía óptica que convierte los cambios de fase en la luz que pasa a través de una muestra transparente en cambios de brillo en la imagen. Estos cambios de fase, aunque invisibles, se hacen visibles cuando se muestran como variaciones de brillo permitiendo una clara visualización de la muestra de semen). |
| O fluorescencia (La muestra se ilumina con luz de una determinada longitud de onda que es absorbida por los fluorocromos, haciendo que emita luz de longitudes de onda más largas (por ejemplo, de un color diferente al de la luz absorbida). |
| Las imágenes se capturan con la cámara digital de alta velocidad Basler ( 25 , 50, 75 o hasta 200 fps) |
| Detección automática de campos no homogéneos, lo que permite un análisis consistente |
| Hay una función de clasificación, grupo , que permite crear grupos de población de esperma, muy útil en investigación. |
| Parámetros modificables: Área de partículas para la detección de espermatozoides, clasificación de la velocidad, VAP, velocidad de captura (frame rate), conectividad, circularidad, restricción de parámetros, como por ejemplo: elongación (para mejorar la detección de células). |
| Otros parámetros modificables: color de la máscara de la trayectoria. |
| Permite capturar hasta 30 campos de la muestra |
| Tiempo de captura es de 1 segundo por campo |
| Compatible con varias cámaras de análisis: Consumibles como la cámara de recuento Leja® , o Makler®. |
| Contaje |
| Parámetros cinemáticos: VCL, velocidad curvilínea (µm/s). Velocidad promedio de una cabeza de espermatozoide a lo largo de su trayectoria curvilínea real, bidimensional, tal y como se percibe en el microscopio. Una medida de vigor celular. VSL, velocidad rectilínea (µm/s). Velocidad promedio de una cabeza de espermatozoide a lo largo de la línea recta entre su primera y última posición detectada. VAP, velocidad promedio (µm/s). Velocidad promedio de una cabeza de espermatozoide a lo largo de su trayectoria media. Esta ruta se calcula suavizando la trayectoria curvilínea de acuerdo con algoritmos del módulo SCA de Motilidad. ALH, amplitud del movimiento lateral de la cabeza (µm). Magnitud del desplazamiento lateral de una cabeza de esperma sobre su trayectoria media. Se puede expresar como un máximo o un promedio del desplazamiento. LIN, linearidad. La linearidad de la trayectoria curvilínea, VSL/VCL. WOB, oscilación. Es una medida de oscilación de la trayectoria recorrida respecto a la promedio, VAP/VCL STR, rectitud. Linealidad de la trayectoria promedio, VAP/VCL BCF, frecuencia de cruce (Hz) La velocidad media a la que la trayectoria curvilínea cruza la trayectoria promedio. |
| Concentración de la muestra (eyaculado o dosis) en M/ml. |
| Total de espermatozoides analizados, su porcentaje en la muestra, concentración en M/ml y en el volumen de de la misma de los espermatozoides clasificados según: |
| Velocidad: Rápidos, Medios, Lentos y Estáticos |
| Clasificación: Rápidos progresivos, Medios progresivos, No progresivos y Estáticos |
| Clasificación: Progresivos, Móviles y Estáticos |
| Hiperactivos |
| Media de los parámetros cinemáticos presentes en la muestra |
| Total del Área de la cabeza / tipo de velocidad |
| Total de células redondas / tipo de velocidad |
| Total y porcentaje de trayectorias circulares |
| ALH y BCF en espermatozoides medios y Rápidos Progresivos |
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