SCA® Mobilité et concentration est un module d’analyse de la mobilité et concentration d’un échantillon de sperme de souris ou rat.
| Ce module d’analyse est disponible aussi pour Humain et Vétérinaire. |
Idéal pour l’essai avec médicaments, produits chimiques et radiations pour sa toxicité. Ce système s’accroche aux directrices 21 CFR11.
Pour plus d’informations :
Dernières nouveautés du SCA® Mobilité et concentration
Dernières nouveautés du SCA® Mobilité et concentration
Histogramme vitesses
Nouvel histogramme de vitesses des spermatozoïdes (VCL).
Paramètre drift
Options permettant de supprimer le mouvement de dérive de l’échantillon.
Sélection de critère
Visualisation des trajectoires selon plusieurs critères.
Exporter vidéo
Exporter vidéo .avi en incluant ou non les trajectoires de l’analyse.
Les principales caractéristiques du SCA® Mobilité et concentration
Les principales caractéristiques du SCA® Mobilité et concentration
SCA® Mobilité et concentration détecte les spermatozoïdes de façon automatique.
Les échantillons sont analysés avec contraste de phases négatif (souris) et pseudo contraste de phases (rat).
Le comptage de spermatozoïdes et l’analyse de la mobilité se font en même temps.
Les spermatozoïdes mobiles sont analysés en suivant la trajectoire du sperme et la vitesse. Les résultats, comprenant tous les paramètres cinématiques du CASA, sont présentés question de secondes.
SCA® est un outil puissant, car le système CASA est la seule méthode objective permettant d’analyser le total de spermatozoïdes progressifs et mobiles d’un échantillon.
Il est possible de sauvegarder les données détaillées (tous les paramètres analysés) de chaque spermatozoïde dans la base de données ou les exporter directement à Microsoft Excel.
Informations supplémentaires
Informations supplémentaires
| Édition Vétérinaire |
Édition Toxicologie |
Édition Recherche |
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| Création de nouvelles configurations d’analyse |  |
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| Modification de la vitesse d’acquisition d’images fps | |
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| Modification de l’optique, microscope échelles et options de captura d’image. | |
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| Choix de caméra d’analyse (Leja®, Makler®, etc) | |
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| Platine motorisée Prior Optiscan III | |
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| Aire de la particule (tête du spermatozoïde) | |
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| VCL ou VAP, STR, LIN, VAP, Connectivité, groupe, restrictions d’analyse | |
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| Espèces: Humain | – | – | |
| Espèces : Toutes (humain, tous les animaux, y compris rat et souris) | – | – | |
| Espèces : Tous les animaux avec tête ovale | |
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| Espèces : rat et souris | – | |
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| Édition Vétérinaire |
Édition Toxicologie |
Édition Recherche |
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| Caméra digitale Basler spécifique avec résolution 780×580 et jusqu’à 75 fps (vitesse de capture d’images) | |
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| Caméra digitale Basler spécifique avec résolution 1280×1024 et jusqu’à 200 fps (vitesse de capture d’images) | |
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| Édition Vétérinaire |
Édition Toxicologie |
Édition Recherche |
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| Total de spermatozoïdes analysés | |
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| Pourcentage des spermatozoïdes analysés Statiques, Non- progressifs et progressifs. | |
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| Concentration en M/ml et dans le volume de l’échantillon. | |
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| Concentration en M/ml et dans le volume de l’échantillon de statiques, non-progressifs et progressifs | |
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| Total et pourcentage de spermatozoïdes analysés rapides, moyens, lents et statiques | |
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| Concentration en M/ml et dans le volume de l’échantillon de rapides, moyens, lents et statiques | |
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| Total et pourcentage de Rapides progressifs, Moyens progressifs, Non- progressifs et Statiques |
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| Concentration en M/ml et volume de l’échantillon de Rapides progressifs, Moyens progressifs, No- progressifs et Statiques |
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| Aire de la tête, Moyenne en µm carrées | |
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| Aire de la tête des statiques, lents, moyens et rapides des spermatozoïdes analysés | |
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| Moyenne des cellules rondes en M/ml | |
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| Concentration totale des cellules rondes en M/ml | |
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| Total et pourcentage des trajectoires circulaires | |
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| Moyenne de VCL, VSL, VAP, LIN, STR, WOB des spermatozoïdes analysés | |
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| Moyenne de VCL, VSL, VAP, LIN, STR, WOB des spermatozoïdes analysés lents, moyens et rapides | |
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| Total et pourcentage des spermatozoïdes analisés hiperactifs | |
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| Concentration des spermatozoïdes hyperactifs en M/ml et en M/échantillon | |
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| Valeurs moyennes de ALH et BCF des spermatozoïdes analysés | |
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| ALH et BCF des spermatozoïdes lents et rapides progressifs | |
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| Images de capture et graphiques de distribution | |
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| Vidéos capturées | |
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| Édition Vétérinaire |
Édition Toxicologie |
Édition Recherche |
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| SCA® dataShare | |
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| SCA® Stage Controller |
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| SCA® Capture | |
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| SCA® Viewer | |
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| SCA® Editor | |
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| SCA® Gouttes | |
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| La mobilité et concentration sont analysés avec contraste de phases (une technique de microscopie optique qui transforme les changements de phase de la lumière qui passe à travers d’un échantillon transparent dans des changements d’éclat de l’image. Ces changements de phase, bien qu’invisibles, se font visibles lorsque se montrent comme des variations d’éclat en permettant une visualisation claire de l’échantillon de semence). |
| Ou fluorescence (L’échantillon s’illumine avec de la lumière d’une longueur d’onde déterminée qui est absorbée par les fluorochromes, en faisant que la lumière émise ait longueurs d’onde plus longues (par exemple, d’une couleur différente à celle de la lumière absorbée). |
| Les images sont capturées avec la caméra digitale de haute vitesse Basler (25 , 50, 75 ou jusqu’à 200 fps) |
| Détection automatique des champs non-homogènes, ce qui permet une analyse régulier |
| Il y a une fonction de classification, groupe, permettant de créer groupes de population de sperme, très outil pour la recherche |
| Paramètres modifiables : Aire de particules pour détecter des spermatozoïdes, classification de la vitesse, VAP, vitesse de capture (frame rate), connectivité, circularité, restriction de paramètres, comme par exemple : élongation (pour améliorer la détection de cellules). |
| Autres paramètres modifiables : couleur du masque de la trajectoire. |
| Permet capturer jusqu’à 30 champs de l’échantillon |
| Le temps de capture est de 1 seconde par champ |
| Filtre intelligent qui supprime automatiquement les déchets des échantillons de semence humain. |
| Comptage |
| Paramètres cinématiques : VCL, vitesse curviligne (µm/s). Vitesse moyenne d’une tête de spermatozoïde au long de sa trajectoire curviligne réelle, bidimensionelle, tel qu’apperçu au microscope. Une mesure de vigueur cellulaire. VSL, vitesse rectiligne (µm/s). Vitesse moyenne d’une tête de spermatozoïde au long de la ligne droite entre sa première et dernière position détectée. VAP, vitesse moyenne (µm/s). Vitesse moyenne d’une tête de spermatozoïde au long de sa trajectoire moyenne. Cette route est calculée en en adoucissant la trajectoire curviligne selon les algorithmes du module SCA de mobilité. ALH, ampleur du mouvement latéral de la tête (µm). Magnitude du déplacement latéral d’une tête de spermatozoïde sur sa trajectoire moyenne. Cela peut s’exprimer comme un maximum ou une moyenne du déplacement. LIN, linéarité. La linéarité de la trajectoire curviligne, VSL/VCL. WOB, oscillation. C’est une mesure d’oscillation de la trajectoire parcourue par rapport à moyenne, VAP/VCL STR, rectitude. Linéarité de la trajectoire moyenne, VAP/VCL BCF, fréquence de Carrefour (Hz) La vitesse moyenne à la que la trajectoire curviligne croise la trajectoire moyenne. |
| Concentration de l’échantillon (éjaculé ou dose) en M/ml. |
| Total de spermatozoïdes analysés, le pourcentage de l’échantillon, concentration en M/ml et dans le volume du même des spermatozoïdes classifiés selon : |
| Vitesse : Rapides, Moyens, Lents, Statiques |
| Classification : Rapides progressifs, Moyenne progressifs, Non-progressifs et Statiques |
| Classification : Progressifs, Mobiles et Statiques |
| Hyperactifs |
| Moyenne des paramètres cinématiques présents à l’échantillon |
| Total de l’aire de la tête / type de vitesse |
| Total de cellules rondes / type de vitesse |
| Total et pourcentage de trajectoires circulaires |
| ALH et BCF des spermatozoïdes moyens et Rapides Progressifs |
Galerie d’images
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Vidéo
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